La unidad básica del multiporador está formada por un módulo
diseñado para electroporar células eucariotas.
Dos módulos funcionales suplementarios amplían el espectro
de aplicaciones del multiporador para la fusión celular o la transformación de bacterias y levaduras. No son
necesarios dispositivos adicionales ni piezas externas. Junto
con los tampones, las cubetas y las cámaras, indicados precisamente
para las correspondientes aplicaciones, el multiporador
conforma un sistema perfecto.
Electroporación de células eucariotas
El Multiporator®, en combinación con el tampón de electroporación
especialmente desarrollado, constituye el sistema
ideal para a electroporación eficiente y cuidadosa de las células
eucariotas. La tecnología Soft Pulse del multiporador emplea
impulsos eléctricos muy cortos permitiendo así elevadas tasas
de supervivencia. Se reducen las influencias negativas para
las células como las modificaciones de pH, la liberación de
aluminio y la electroforesis del contenido celular. Los parámetros
relevantes, como la tensión y la duración de los impulsos, se
configuran directamente y se mantienen con exactitud gracias al
control electrónico patentado de la descarga de impulsos*1 –
independientemente de la resistencia de la prueba-, garantizando
así resultados fiables y reproducibles.
El sistema tampón hipoosmolar aumenta la eficiencia de
la transfección, especialmente en las células de mamíferos. El
tampón permite una electrodeformación de las células, facilitando
la penetración de la membrana. El sistema tampón libre de
sodio está adaptado al medio interno de las células y estabiliza
el gradiente de Na+/K+ a través de la membrana celular,
logrando así que los experimentos de transfección más
exigentes funcionen.
El campo de aplicaciones abarca la transfección de líneas de
células animales y humanas, células madre embrionarias, células
primarias, oocitos y células vegetales.
Dos módulos funcionales suplementarios aumentan los campos
de aplicaciones del multiporador, haciendo también posible
la transfección de bacterias y levaduras y la fusión celular.*1, 2, 3
*1 Sergio Gonzalez, Daniela Castanotto, Haitang Li, Simon Olivares, Michael C. Jensen,
Stephen J. Forman, John J. Rossi, Laurence J.N. Cooper:
Amplification of RNAi-Targeting HLA mRNAs (Molecular Therapy, Vol. 11, 2005)
*2 Reena P. Vishwanath, Christine E. Brown, Jamie R. Wagner, Hunsar B. Meechoovet,
Araceli Naranjo, Christine L. Wright, Simon Olivares, Dajun Qian, Laurence J.N. Cooper,
Michael C. Jensen: A quantitative high-throughput chemotaxis assay using
bioluminescent reporter cells ( Journal of Immunological Methods, 2005
*3 Lindsay M. Shafer and Lee W. Slice: Anisomycin induces COX-2 mRNA expression through p38MAPK
and CREB independent of small GTPases in intestinal epithelial cells,
(Biochimica et Biophysica Acta (BBA) – Molecular Cell Research, 2005)
